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    當(dāng)ELISA試劑盒同一批次提取蛋白跑出的條帶不一致

    發(fā)布時(shí)間: 2017-12-22  點(diǎn)擊次數(shù): 2136次

    ELISA試劑盒每次提蛋白后會將樣品在短時(shí)刻內(nèi)重復(fù)2-3次WB,可是每次跑出的條帶趨勢不共同,上樣量和其他條件都沒有變,內(nèi)參根本是規(guī)整安穩(wěn)的,不知道為什么意圖條帶就是不共同?
    首要內(nèi)參安穩(wěn)闡明上樣量安穩(wěn)(應(yīng)該大致是一樣的),所以不存在什么上樣量不一樣的問題;呈現(xiàn)這樣的成果,問題出在每一步都有一定的可能性,比如電泳,轉(zhuǎn)膜,敷抗體,顯色等等。但據(jù)我所知,WBzui要害的仍是轉(zhuǎn)膜和敷抗體步驟,可能是你敷抗體的時(shí)分敷的不均勻。我的主張是你再認(rèn)認(rèn)真真,仔仔細(xì)細(xì)做幾遍,很可能重復(fù)性就做出來了。僅僅個(gè)人觀點(diǎn)。  
    ELISA試劑盒根本操作的問題我們沒必要去考慮。我認(rèn)為問題的要害在于成像的進(jìn)程。同一張膜,本人能夠在成像的時(shí)分,做出*不同的圖片成果。顯色液的滴加,量,以及曝光時(shí)刻,條帶色彩(要求灰色而不是黑色)。所以有圖片闡明問題。  
    說是內(nèi)參共同,而意圖條帶每次都不一樣,我想說原因可能是在顯影液環(huán)節(jié),簡單來說就是你的膜沒有淋潔凈,上面殘留參差不齊的T/TBS,T/TBS能稀釋顯影液,意圖條帶正本表達(dá)量就少,某一個(gè)點(diǎn)殘留的T/TBS略微多一點(diǎn)就可能導(dǎo)致顯影作用下降,所以主張?jiān)陲@影液反響前,盡量將膜上的洗膜液淋掉(當(dāng)然也不能讓膜干了,要是實(shí)驗(yàn)室富裕的話,也能夠多添點(diǎn)顯影液,作用一樣),期望對你有協(xié)助。  
    可能觸及幾個(gè)原因:1,拔梳子時(shí)膠錯動,參加樣本后進(jìn)入其他孔或漏出。由于內(nèi)參表達(dá)高,可能不會顯示出差異。2,參加樣本時(shí)不均勻也可能會發(fā)生差錯。3,制膠應(yīng)確保均勻無氣泡,玻璃板潔凈,這樣才干確保成果共同牢靠。
    ELISA試劑盒盡管用WB做出一張滿足的成果觸及多個(gè)環(huán)節(jié),但向上面你說到的內(nèi)參沒有問題,闡明各項(xiàng)操作根本是過關(guān)的,據(jù)我猜想很可能是zui終一步曝光呈現(xiàn)的問題,加發(fā)光液反響的時(shí)刻及曝光的時(shí)刻都會對zui終的成果發(fā)生影響, 還有一種可能你的發(fā)光液的安穩(wěn)性或許不太好,期望對你有所協(xié)助,哪里說的不對也請多指導(dǎo).  

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